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                hTERT-成纖維細胞培養解決方案

                 更新時間:2023-03-29 點擊量:500


                 hTERT成纖維細胞為永生化子宮內膜成纖維細胞 (T HESC) 具有延長的壽命,并且在核型、形態和表型方面與原代親代細胞相似。在功能上,T HESCs 顯示激素治療后蛻膜化的生化終點。
                  THESCs 來源于從患有肌瘤的成年女性身上獲得的基質細胞。原代基質子宮內膜細胞通過用來自包裝細胞系 pA317-hTERT 的上清液感染而永生化,該細胞系表達 hTERT 和嘌呤霉素抗性基因。

                hTERT成纖維細胞培養方案如下:
                一、所需材料
                Dulbecco 改良 Eagle 培養基 (DMEM)/F12 (Sigma, D2906)
                碳酸氫鈉
                ITS+ Universal Culture Supplement Premix (BD, 354352)
                嘌呤霉素
                木炭/葡聚糖處理的胎牛血清(Hyclone,SH30068.03)
                胰蛋白酶-EDTA 溶液(HBSS 中的 0.25% 胰蛋白酶/0.53 mM EDTA)
                細胞培養測試的 DMSO 
                實驗耗材:T75細胞培養瓶、T25細胞培養瓶、nest錐形瓶、移液槍吸頭等
                實驗室儀器:-80冰箱、知楚二氧化碳振蕩搖床、恒溫水浴鍋、瑞寧移液器、液氮罐、倒置顯微鏡等
                二、培養基的制備
                這些細胞系的基礎培養基是 DMEM/F12,輔以:
                1.5 克/升碳酸氫鈉
                1% ITS+ Universal Culture Supplement Premix
                500 納克/毫升嘌呤霉素
                10% 木炭/葡聚糖處理的胎牛血清
                三、冷凍細胞的處理程序和培養的啟動
                為確保高活力,解凍小瓶并在收到后盡快開始培養。如果到達后需要儲存冷凍培養物,請將小瓶儲存在液氮蒸氣中,而不是-70°C。在 -70°C 下儲存會導致活性喪失。
                有關從每批 ATCC 子宮內膜成纖維細胞中回收的活細胞總數,請參閱產品信息表最后一頁上提供的批次特定信息。
                準備一個含有推薦的培養基的 25 cm2 或 75 cm2 培養瓶。在添加小瓶內容物之前,應將含有生長培養基的容器置于培養箱中至少 15 分鐘,以使培養基達到其正常 pH 值(7.0 至 7.6),并避免在恢復過程中培養基堿度過高的細胞。
                在 37°C 水浴中輕輕攪拌解凍小瓶。為減少污染的可能性,請將 O 形圈和蓋子遠離水。解凍應該很快(大約 2 分鐘)。
                1.細胞解凍后,請盡快從水浴鍋中取出,并使用 70% 乙醇溶液來進行凈化。操作過程需要在無菌環境中進行,避免污染。
                2.將小瓶內容物轉移到含有 6.0 至 8.0 mL 培養基的離心管中,并以大約 125 xg 的速度將細胞懸浮液離心 5 至 7 分鐘。
                3.丟棄上清液并將細胞重新懸浮在新鮮的生長培養基中(有關推薦的稀釋比,請參閱特定于批次的信息)。將此懸浮液添加到準備好的培養容器中。
                4.在 37°C、5% CO 2加濕培養箱中孵育培養物。
                四、繼代培養程序
                使用nest的T75錐形瓶進行培養的體積。增加或減少其他尺寸的培養容器所需的解離介質的量。
                hTERT成纖維細胞傳代培養注意事項
                為避免結塊,在等待細胞分離時不要敲打或搖動燒瓶。難以分離的細胞可置于 37°C 以促進分散。細胞培養過程中需要每 2 到 3 天更新一次培養基。
                1.有關細胞傳代培養的濃度,請參閱產品信息表。當確定細胞已準備好進行傳代培養時,繼續下一步。
                2.取出并丟棄介質。
                3.向燒瓶中加入 2.0 至 3.0 mL Trypsin-EDTA 溶液,在倒置顯微鏡下觀察細胞,直至細胞層分散(通常在 5 至 15 分鐘內)。
                4.添加 6.0 至 8.0 mL 的生長培養基,并通過輕輕移液吸出細胞。
                5.將細胞懸浮液轉移到 15 mL 離心管中,并以大約 125 xg 的速度旋轉 5 至 10 分鐘。
                6.丟棄上清液并在新鮮生長培養基中重懸細胞。將適當的細胞懸浮液等分試樣添加到新的細胞搖瓶中。
                7.有關推薦的接種濃度,請參閱產品表。
                五、細胞凍存
                在以下培養基中冷凍細胞:95% 生長培養基,5% DMSO。將小瓶儲存在液氮蒸氣中。避免將小瓶浸入液氮中。
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